Abstrakt
Vyysokoúčinná kapilární elektroforéza (HPCE) umožňuje
využít všechny základní elektromigrační techniky - zónovou elektroforézu (CZE),
isoelektrickou fokusaci (CIEF), izotachoforetické dělení (ITP), gelovou elektroforézu
(CGE). Micelární elektrokinetická chromatografie (MEKC) umožňuje mimo jiné
elektromigrační separaci neionogenních sloučenin. Základní instrumentace HPCE
vždy obsahuje alespoň jednu separační kapiláru, zdroj napětí, dávkovač vzorku,
detektor a zařízení pro záznam analytického signálu.
Související informace
·
Elektroforéza v polyakrylamidovém gelu
Text
1.
Úvod
2.
Micelární
elektrokinetická chromatografie (MEKC)
3.
Elektroosmotický
tok (EOF)
4.
Instrumentace
v HPCE
5.
Aplikace
HPCE v klinické chemii
A.
Předúpravy
vzorků
B.
Některé
oblasti aplikací HPCE, příklady
B.1. Aminokyseliny
B.2. Léky
B.3. Vitaminy
B.4. Katecholy a
katecholaminy
B.5. Peptidy,
proteiny, glykoproteiny
B.6. Kortikosteroidy
B.7. Organické
kyseliny
B.8. Malé ionty
B.9. Nukleotidy,
oligonukleotidy a nukleové kyseliny
1.
Úvod:
Vysokoúčinná kapilární elektroforéza (HPCE) - splňuje
základní požadavky na moderní separační techniku:
2.
Micelární elektrokinetická chromatografie (MEKC)
MEKC umožňuje mimo jiné elektromigrační separaci
neionogenních sloučenin. Použitím surfaktantu v elektrolytu (anionogenní např.
sodium dodeczl sulfát (SDS), žlučové kyseliny, kationogenní
cetyltrimethylamonium chlorid (CTAC), neionogenní Triton X-100) vznikají
koloidní shluky (micely) na povrchu polární a uvnitř nepolární. Umožňuje
separovat ionty s nízkou pohyblivostí.
3. Elektroosmotický tok (EOF)
Náboj u stěny kapiláry ovlivňuje profil snímaného
signálu detekované látky. Potlačuje se u CZE, využívá se u MEKC.
3.
Instrumentace v HPCE
Základní instrumentace HPCE vždy obsahuje alespoň jednu
separační kapiláru, zdroj napětí, dávkovač vzorku, detektor a zařízení pro
záznam analytického signálu.
Kapiláry
Kapiláry jsou obvykle křemenné pokryté
tenkou vrstvou polyimidu, výjimečně teflonové nebo skleněné s typickým vnitřním
průměrem 50 - 100 µm, celková délka bývá 20 - 100 cm. Následkem působení
elektrického pole v kapiláře vzniká tzv. elektroosmotický tok (EOF), který je v
mnoha případech jevem nežádoucím, u micelární elektrokinetické chromatografie
(MEKC) je naopak podporován, ovlivňuje se buď potažením vnitřní stěny kapiláry
ochrannou vrstvou nebo vlastnostmi separačního systému tj. pH, teplotou,
organickými modifikátory. Trend modifikace kapilár pro gelovou kapilární
elektroforézu a isoelektrickou fokusaci směřuje k používání roztoků lineárních
polymerů, kde funkčnost kapiláry lze obnovit prostým promytím roztokem
příslušného polymeru.
HPCE využívá zdroj napětí v
rozsahu 0 - 30 kV a proudu 0 - 300 mA.
Objem několika nanolitrů vzorku
se v HPCE dávkuje nejčastěji hydrodynamickým tokem nebo elektromigračně.
Je většinou zajištěna on-line
snímáním signálu přímo v kapiláře:
-
UV
detekce je využívána nejčastěji,
-
diode-array
(DAD) je pro identifikaci elektroforetických píků při práci s biologickými
matricemi velmi vhodnou metodou,
-
laserem
indukovaná fluorescence (LIF) poskytuje vysokou citlivost analýzy (v ukázkových
případech odpovídá detekční limit pouhým 600 molekulám),
-
hmotově
spektrometrická detekce (CE-MS), ve spojení s HPCE má největší význam ionizace
elektrosprayem (ESI),
-
amperometrická
detekce rozlišuje oxidovatelné ionty (např. katecholaminy),
-
konduktometrická
detekce využívá skutečnost, že vodivost zón analytu se liší od vodivosti
pracovního elektrolytu.
5. Aplikace HPCE v klinické chemii
Aplikace kapilárních elektromigračních technik má
nesporně mnoho výhod. Nejenom vysoká separační účinnost, selektivita, rychlá
přestavitelnost systému na jiný separační režim, ale také skutečnost, že
kombinací dostupných elektromigračních technik lze rozdělit téměř všechny typy
sloučenin při minimální spotřebě elektrolytů a extrémně nízkých objemech
vzorků, otevírá nové perspektivy v biochemii. Je řada aplikací umožňujících
přímou analýzu biologického materiálu, ale na druhé straně je nutno čas to
řešit specifické problémy biologických matric (např. řádové rozdíly v
koncentracích stanovovaných analytů, možné interference apod.). Cesta od
modelové separace standardních směsí ke stanovení analytu v biologickém
materiálu musí také u HPCE projít důkladným optimalizačním postupem podmínek
vlastní separace, ale i předseparačních úprav vzorku.
· ředění (moč),
· deproteinace např.
acetonitrilem, etanolem, ultrafiltrací,
· zakoncentrování a čištění
vzorku:
- přímo
v kapiláře využitím kombinace ITP a CZE,
-
extrakčně kapalinou (rozpouštědly, pufry) nebo na pevné fázi (C18, ionexy
apod.),
-
hydrolýza.
B.1. Aminokyseliny - thiokarbamylderiváty nebo
derivatizace fenylthiohydantoinem, dansylchloridem, či monobrombimanem, UV nebo
LIF detekce, doba analýzy 13 - 30 minut.
B.2. Léky - monitorování včetně
metabolitů, možnost rozlišení optických izomerů, určení vazebné kapacity léku
na proteiny - nejčastěji MEKC s použitím SDS, UV detekce, doba analýzy 7 - 15
minut.
B.3. Vitaminy a jejich
metabolity
jako např. B-vitaminy, C-vitamin, kyseliny nikotinová a listová - CZE, UV
detekce.
B.4. Katecholy a katecholaminy - vanilmandlová, homovanilová,
a 5-hydroxyindoloctová kyselina, MEKC, UV detekce.
B.5. Peptidy, proteiny,
glykoproteiny
- mapování peptidů (CZE), analýzy sérových proteinů (SDS-CGE), separace
hemoglobinů (CIEF), cytokiny, transferiny, stanovení enzymových aktivit
izoenzymů LD.
B.6. Kortikosteroidy - MEKC s SDS v přítomnosti
močoviny, UV detekce, 20 minut.
B.7. Organické kyseliny - citrát, oxalát, laktát,
acetát, butyrát (ftalátový pufr, UV detekce, doba analýzy 5 minut, nebo možnost
konduktometrické detekce při separačním systému morfolinetansulfonové kyseliny
a histidinu).
B.8. Malé ionty - chloridy, bromidy, rodanidy,
fluoridy - MEKC
B.9. Nukleotidy,
oligonukleotidy a nukleové kyseliny (např. sekvence bází v molekule DNA, oligothymidylové
kyseliny, ribonukleosidy, cyklické nukleotidy, analýza PCR produktů, CGE, MEKC,
LIF nebo UV detekce).
Poznámky
Appendixy
Literatura
Autorské poznámky